食品分析實驗 · W5
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食品分析實驗 · W5

蛋白質 凱氏定氮法

Protein — The Kjeldahl Method
食品分析實驗 · 4 小時課程
消化 · 蒸餾 · 滴定 · 換算係數 · 三聚氰胺事件 · 回收率 QC
濃 H₂SO₄ 消化40% NaOH 蒸餾4% 硼酸捕氨係數 5.7/6.25/6.38三聚氰胺事件
課前導覽影片(2 分半)

上課前先看:一顆氮原子怎麼變成「蛋白質 26%」這個數字?

內容:① 消化(濃 H₂SO₄+觸媒錠,氮 → NH₄⁺)→ ② 蒸餾(NaOH、NH₃ 落進硼酸)→ ③ 滴定(1 HCl = 1 NH₃ = 1 N)→ %N × 6.38 = 26.0%;三聚氰胺走同一條路;係數要選對。 在 YouTube 開啟 →

開始前,先看兩支工廠影片
凱氏法量的到底是氮,還是蛋白質?

奶粉工廠(16:54–18:08,三聚氰胺事件——蛋白質檢測是怎麼被騙的) 麵粉工廠(15:11–16:14,NIR 同時測蛋白質/水分/灰分,8–13% 蛋白質決定做麵包還是蛋糕)

今天的關鍵問題:凱氏法(跟後面會提到的 Dumas 燃燒法一樣)其實只測得到「總氮量」, 再用一個換算係數把氮換成「蛋白質」——這個假設什麼時候會出錯? 三聚氰胺(melamine)事件就是最有名的一次。

先算一個數字記在心裡: 三聚氰胺 %N ≈ 66.6%,若混入 1 g / 100 g 樣品,表觀蛋白質(用總氮×係數算、未扣非蛋白氮的數字;以乳品係數 6.38 計)會虛增約 4.25 個百分點——等一下我們一起重新算一次。

互動實驗室

一個氮的旅程:預測 → 觀察 → 解釋

六幕:預測 → ① 消化 → ② 蒸餾 → ③ 滴定 → 三聚氰胺 → 換算係數;每幕看完答對才能下一幕。 另開實驗室 ↗

今天的學習目標

上完 W5,你應該會…

  • 說出凱氏定氮法的三個階段:消化、蒸餾、滴定,以及各自的目的
  • 分辨蛋白質氮與非蛋白氮(NPN),並解釋為什麼三聚氰胺能騙過凱氏法
  • 選對換算係數(一般 6.25/小麥穀類 5.7/乳品 6.38),並知道選錯會造成多大誤差
  • 用 %N=(V樣品−V空白)×NHCl×14.007/W×100 算出樣品的 %N 與蛋白質%
  • 說出蒸餾回收標準品(硫酸銨)與消化效率標準品(胺基酸)分別在檢查什麼
  • 遵守濃硫酸/NaOH 相關安全規範,並完成 4 小時的分工與輪站

理論複習:蛋白質定性/定量方法的完整原理,本課不重複——完整內容在 📖 完整原理 deck (Nielsen Ch18) → 那份教材。

原理:三階段

消化 → 蒸餾 → 滴定

凱氏定氮法三階段 ① 消化 Digestion 濃 H₂SO₄ + K₂SO₄(升沸點)+CuSO₄(觸媒) 加熱至 ~420°C,至澄清 有機氮 → (NH₄)₂SO₄ 釋出 SO₂/SO₃ 白煙 ② 蒸餾 Distillation 加入過量 40% NaOH 水蒸氣蒸餾釋出 NH₃ 收集於 4% 硼酸 溴甲酚綠–甲基紅混合指示劑 ③ 滴定 Titration 標準化 HCl 滴定 滴到指示劑變色終點 V(HCl) 換算成 N 硼酸本身不需標定 量到的是「總氮」——蛋白質氮 + 非蛋白氮(NPN)都算進去 蛋白質 % = %N × 換算係數(一般 6.25/小麥 5.7/乳品 6.38)
關鍵一句:硼酸本身不需要標定——它只負責「捕捉」NH₃,真正用來定量的是後面已標準化的 HCl。
觸媒錠的兩個角色:K₂SO₄ 提高硫酸沸點(使消化溫度可達約 420°C);CuSO₄ 為觸媒,加速有機物氧化分解。 📖 完整原理 deck (Nielsen Ch18) →
裝置圖

消化爐與蒸氣蒸餾儀

① 消化:消化爐+排煙 洗氣/抽氣 (中和 SO₂/SO₃) 加熱塊 約 420 °C 8 管位:5 盲樣+空白+回收+麵粉 消化管 (長直管) 消化液 澄清後 淡藍綠 濃 H₂SO₄+觸媒錠(K₂SO₄/CuSO₄) 有機氮 → (NH₄)₂SO₄ ② 蒸氣蒸餾:NH₃ 收集到硼酸 蒸氣產生器 蒸氣 消化管移到蒸餾儀 40% NaOH 過量加入 防濺頭 NH₃+蒸氣 冷卻水進 冷卻水出 冷凝管 接收瓶:4% 硼酸 +混合指示劑 (出口浸入液面下) NH₄⁺+OH⁻ → NH₃↑;NH₃+H₃BO₃ → NH₄⁺+H₂BO₃⁻;再以標準 HCl 滴定 H₂BO₃⁻
蒸餾時接收瓶的出口要浸在硼酸液面下,NH₃ 才不會逸散;蒸餾結束先把接收瓶放低、讓出口離開液面,再關蒸氣,避免倒吸。示意圖,實際外觀依廠牌而異。
蛋白質 = %N × 換算係數

凱氏法量的是「總氮」,不是「蛋白質」

換算係數適用理由(簡述)
6.25一般食品(通用值)假設蛋白質平均含氮 16%(1/0.16=6.25)
5.7小麥/穀類穀類蛋白麩質含氮比例較高,需用較小係數
6.38乳品酪蛋白等乳蛋白含氮比例較低,需用較大係數
凱氏法(與 Dumas 燃燒法一樣)量的是「總氮」,包含蛋白質氮,也包含非蛋白氮(non-protein nitrogen, NPN)——例如三聚氰胺、尿素、游離胺基酸、核酸等。換算係數是「假設氮全部來自蛋白質」下的近似值,一旦樣品混了高氮的非蛋白物質,算出來的「蛋白質%」就會被虛增。
Dumas 燃燒法:把樣品在高溫下完全燃燒,直接測氮氣量,比凱氏法快(數分鐘 vs 數小時),但一樣測的是總氮、一樣會被 NPN 干擾——本次實驗不做,僅供比較認識。
註:小麥/穀類的 5.7,是 Jones/Codex 沿用已久的傳統換算係數。
小遊戲 ①這個氮,算不算「蛋白質氮」?0 / 8
把 8 個氮的來源分到「蛋白質氮」或「非蛋白氮 (NPN)」。
重新算一次

三聚氰胺事件:為什麼凱氏法會被騙?

三聚氰胺 (melamine, C₃H₆N₆):MW=126.12,含氮量高達 66.63%

  • 正常牛奶的氮幾乎全來自酪蛋白等乳蛋白(蛋白質氮)
  • 不肖業者把水稀釋過的奶粉,故意加入三聚氰胺——它不是蛋白質,但氮含量極高
  • 凱氏法只看「總氮」,分不出這個氮是蛋白質來的還是三聚氰胺來的
算給你看:每混入 1 g 三聚氰胺 / 100 g 樣品(即 1% w/w):
貢獻的 %N = 1% × 66.63% ≈ 0.6663 個百分點
以乳品係數 6.38 換算,虛增的表觀蛋白質 ≈ 0.6663 × 6.38 ≈ 4.25 個百分點

也就是說:只要摻入約 1% 的三聚氰胺,凱氏法測出的「蛋白質%」就能被拉高 ~4.3 個百分點——足以把稀釋摻水、蛋白質本來不足的奶粉,偽裝成「合格」。
事件重建・示意數據

摻偽曲線:三聚氰胺混入比例 vs 表觀蛋白質

示意數據:以全脂奶粉(真實蛋白質約 26.0%)為基準,x 軸為三聚氰胺混入比例(% w/w,等距),y 軸為凱氏法測出的表觀蛋白質%。曲線之所以是直線上升,是因為凱氏法無法分辨氮的來源。
校正與品管 (QC)

開始前/過程中要確認的 4 件事

⚗️
HCl 標定
滴定用的 HCl 須先用 Na₂CO₃ 或 THAM(Tris)等一級標準品標定出精確濃度,才能拿來換算 %N
🧪
試劑空白 (blank)
空管走完整套消化+蒸餾+滴定流程(不加樣品),扣除試劑本身帶入的微量氮
♻️
蒸餾回收標準品
用已知氮量的硫酸銨(理論 %N=21.20%)走蒸餾+滴定,檢查 NH₃ 有沒有被完全蒸出、捕捉
🔬
消化效率標準品
用離胺酸鹽酸鹽或色胺酸等有機氮標準品走全流程,檢查消化階段是否把有機氮完全轉化
校正與品管 (QC)

算給你看:回收率與終點判讀

算給你看(蒸餾回收):秤 0.0500 g 硫酸銨(理論%N=21.20%),走蒸餾+滴定測得 %N=21.01%,回收率 = 21.01/21.20×100 ≈ 99.1%(AOAC 991.20:硫酸銨 ≥99%、離胺酸鹽酸鹽 ≥98%)。
算給你看(消化效率):離胺酸鹽酸鹽理論%N=15.34%,走全流程測得%N=15.10%,回收率≈98.4%。這兩個標準品本學期先由 TA 示範一管,讓全班理解原理,未列入下方 8 管的分組排程。
指示劑終點一致性:全班用同一批 4% 硼酸+混合指示劑,滴定終點要一致:吸收 NH₃ 後接收液呈綠色,以 HCl 滴到綠色褪去、轉為灰紫/淡粉紅即為終點,避免組間判讀落差。
樣品與輪站分工

一套凱氏設備(消化爐 + 蒸餾儀),只能容納 8 管

  • 盲樣:全學期共同的全脂奶粉——W2 測過水分、W3 測過灰分,本週測蛋白質。5 組各消化 1 管盲樣,全班湊成 n=5(每組貢獻一個值),彙整成平均值 ± SD
  • 另外 3 管為品管與比較用:1 管試劑空白、1 管蒸餾回收標準品(硫酸銨)、1 管高筋麵粉——高筋麵粉這管由 1 組代表操作,結果全班共用
  • 低筋(蛋糕)麵粉的結果由助教提供(前一次操作的數據),用來跟高筋麵粉比較——本次消化爐排程已滿 8 管,無法再現場加測
  • 消化效率標準品(離胺酸鹽酸鹽)仍由 TA 示範一管,不占用班級排程
  • 合計:5(盲樣) + 1(空白) + 1(回收標準品) + 1(高筋麵粉) = 8 管
⚠️ 請 TA 開課前務必確認:消化爐與蒸餾儀確實能容納 8 管同時排程——本排程剛好把 8 管的容量用滿,沒有多餘空間,若設備容量不足 8 管,需提前調整分組或分批消化。

只有一套設備:所有管子一起消化,再依序輪流蒸餾+滴定,每管約 8–10 分鐘。
4 小時課程時間表

消化集中進行,蒸餾滴定輪站

時間內容
0:00–0:20講解+安全:濃硫酸、NaOH 危害與應變
0:20–0:50各組秤樣,加入催化錠與濃硫酸(於通風櫃內操作)
0:50–2:20消化(全部 8 管一起加熱至澄清)——空檔進行換算係數討論、三聚氰胺案例、計算練習
2:20–2:35冷卻至室溫後,沿管壁緩慢少量加水稀釋
2:35–4:00蒸餾+滴定輪站:8 管 × 每管約 8–10 分鐘 ≈ 65–80 分鐘,85 分鐘的時段足夠,各組記錄自己樣品的滴定體積
若時間不夠:已消化完成的管子可加蓋暫存, 由 TA 於課後或下週協助完成蒸餾與滴定,不影響消化階段已完成的化學反應。
安全守則

濃硫酸 · NaOH · 廢液

🥽
濃硫酸高溫+白煙
消化產生 SO₂/SO₃ 刺激性氣體,全程在通風櫃/洗滌塔下操作;配戴面罩與耐酸手套
💧
稀釋要沿管壁緩慢加水
冷卻至室溫後,才能沿管壁緩慢、少量加水稀釋,切勿大量快速加水——否則劇烈放熱會噴濺灼傷
⚠️
40% NaOH 具強腐蝕性
蒸餾時加入的 NaOH 濃度高,沾到皮膚/眼睛立即大量清水沖洗並通知助教
♻️
銅觸媒廢液分開收集
消化後含銅廢液屬重金屬廢液,須依規定分開收集,不可與一般廢液混合
小遊戲 ②凱氏定氮法操作流程排序— / 7
用 ▲▼ 把凱氏定氮法的 7 個步驟排成正確順序。
小遊戲 ③食品配對它的換算係數0 / 6
把 6 種食品分到它應該使用的「換算係數」。
計算:從滴定量到 % 蛋白質

先扣空白,再乘換算係數

%N = (V樣品 − V空白) × NHCl × 14.007W樣品(g) × 1000 × 100  蛋白質% = %N × 換算係數

每 1 mmol HCl ↔ 1 mmol NH₃ ↔ 1 mmol N = 14.007 mg N;÷(W×1000) 把 mg 換成 g、×100 成為 %。

全脂奶粉(盲樣)範例:秤 0.5000 g,空白 0.30 mL,滴定用去 14.86 mL,0.1000 N HCl
%N = (14.86−0.30)×0.1000×14.007/(0.5000×1000)×100 ≈ 4.079%
蛋白質% = 4.079 × 6.38 ≈ 26.02%(乳品係數)
高筋麵粉範例(全班共用的那一管):秤 1.0000 g,空白 0.30 mL,滴定用去 16.58 mL,0.1000 N HCl
%N ≈ 2.280%;蛋白質%(係數5.7) = 2.280×5.7 ≈ 13.00%
⚠️ 係數選錯的代價:同一份高筋麵粉的 %N,若誤用一般係數 6.25 而非小麥係數 5.7,算出的蛋白質% 會從 13.00% 變成 14.25%——虛高約 9.6%(相對誤差),這是一種系統性誤差(systematic error),跟三聚氰胺一樣,都跟「氮不等於蛋白質」這個假設有關,只是原因不同(選錯係數 vs 樣品被摻偽)。
低筋(蛋糕)麵粉%N≈1.404%,蛋白質%(係數5.7)≈8.00%——本次由助教提供(前次操作數據),本班未現場加測這一管,比高筋麵粉低,這正是烘焙時「高筋做麵包、低筋做蛋糕」的依據。
小遊戲 ④計算闖關:全脂奶粉的蛋白質 %未作答
秤 0.5020 g 全脂奶粉,試劑空白 0.32 mL,滴定用去 15.02 mL 的 0.1000 N HCl。求蛋白質 %(乳品換算係數 6.38)。公式:%N=(V樣品−V空白)×N×14.007/(W×1000)×100,蛋白質%=%N×6.38。
%
小遊戲 ⑤凱氏法原理 即時測驗0 / 5
小遊戲 ⑥決策挑戰:QC 與判讀0 / 5
課後作業

Colab NB05

📥
讀入滴定紀錄
載入本組與全班的滴定體積、樣品重量原始資料
🧮
算 %N 與蛋白質%
兩種麵粉+盲樣:計算 %N、蛋白質%,並彙整全班盲樣的平均值 ± SD(n=5)
♻️
回收率與係數討論
討論蒸餾回收率、消化效率標準品的意義,以及選錯換算係數/遇到 NPN 的影響

Colab NB05:在 Colab 開啟 NB05 ↗ ・入門(不用寫程式):Excel 練習檔 EX05 ⬇。
報告需包含:兩種麵粉與盲樣的 %N、蛋白質%(盲樣為全班平均值 ± SD)、蒸餾回收率、以及對「換算係數」與「非蛋白氮」的討論。
盲樣結果留著別丟:本週測得的全脂奶粉蛋白質%,將在 W8 與水分(W2)、灰分(W3) 一起彙整回顧。

自我檢核

今天結束,你應該會…

點一下打勾——確認自己真的會了。

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